ELISA 安定性 ≤± 0.003Abs マイコトキシン テスト スタッド-2000A 波長 400~900nm

ST-2000A ミコトキシン検査

ST-2000Aミコトキシン分析器は,アフラトキシンと酵素結合免疫吸収剤の測定に必要な分析装置です.固体相酵素結合免疫吸収剤 (ELISA) の原則は,酵素結合免疫吸収検査 (ELISA)この楽器とB1キットから構成されています限られた量でサンプル内のアフラトキシンB1および他のミコトキシン含有量を決定するために使用できる (他のキットと装備されている場合)食品,飼料,油,乳製品,医薬品,飲料,ワインなどの製品におけるアフラトキシンB1および他のミコトキシンの検出に使用されています.

性能特性:

1画面操作:色LCD画面,ビデオ電話配送ボード,ボード全体の情報の表示,タッチスクリーン操作

2振動プレートの機能:レベル3振動プレートの速度,0-255秒間調整可能な時間

3ワークステーション:プロフェッショナルな酵素マーカーソフトウェアで,プログラム500グループ,サンプル結果100000を保存し,吸収量,線形方程式,ロガリズム方程式,二次方程式,立方方程式,吸収率%濃度 ロガリズム方程式,スライン関数,阻害率など

技術パラメータ:

光源:DC12V 22W 輸入ハロゲンランプ

波長範囲:400~900nm

フィルター:405, 450, 492, 630nm 標準,他の波長はオプション

読み取り範囲:0〜4000Abs

決議:0.001Abs

表示誤差:≤±0.01Abs

安定性:≤±0.003Abs

繰り返し性:≤ 0.3%

サイズ:400mm×260mm×200mm

1 原則と適用

このキットでは,穀物,飼料,その他のサンプルでアフラトキシンB1 (AFB1) を検出するために間接的な競争力のあるELISA方法を使用します.キットは,結合抗原で前もって覆われた酵素でラベルされたプレートで構成されています.胡桃の酵素マーカー試験中に,標準溶液またはサンプル溶液を追加します.試料内のアフラトキシンB1と酵素プレートは,抗アフラトキシンB1抗体への競争のために,結合抗原で前もって覆われています.酵素マーカーを加えた後,TMB基質を使用して色を展開します.サンプル吸収量は,サンプルに含まれるアフラトキシンB1の含有量と負の相関関係があります.標本内の残留アフラトキシンB1の量は,標準曲線と比較して得ることができる..

2 技術指標

2.1 キットの感受性:0.03ppb (ng/ml)

2.2 反応モード:25 °C,30分~15分

2.3 下部検出制限:

穀物 0.15ppb

配方飼料 0.3 ppb

食用油,ピーナッツ油 0.6ppb

ソヤソース,小麦その他の飼料

ビール 0.3 ppb

ワイン,ソヤソース,エサ

2.4 交差反応速さ:

アフラトキシンB1 100%

2.5 検体回収率:

穀物と食用食品の調理用食品 85% ± 15%

ピーナッツ 82 ± 15%

食用油 85 ± 15%

ソーヤソース,小麦その他の飼料 83 ± 15%

ビール 84 ± 15%

ワイン,ソヤソース,アジガ... 87 ± 15%

3 キットの組成

酵素マーカープレート 96穴

標準溶液 (黒い蓋) 1ml

0ppb0.03ppb0.06ppb0.12ppb0.24ppb0.48ppb

高標準溶液: 100ppb 1ml

酵素マーカー (赤いキャップ) 5.5ml

抗体作用溶液 (青いキャップ) 5.5ml

基質溶液A (白いキャップ) 6ml

基板液体B (黒いカバー) 6ml

終結溶液 (黄色いキャップ) 6ml

20X濃縮洗剤 (白いカバー) 40ml

操作説明書 1本

4 必要な機器と試料

4.1 装置:アフラトキシン検査機,プリンター,同化器,窒素乾燥装置,振動器,遠心器,段階ピペット,バランス (感度0.01g)

4.2 マイクロパイペット:単チャンネル 20 μl~200 μl,100 μl~1000 μl,多チャンネル 300 μl

4.3 反応剤:メタノール,n-ヘキサン,トリクロロメタンまたはダイクロロメタン

5 サンプル予備処理

5.1 試料処理前の指示:

実験装置は清潔で,汚染や実験結果への干渉を避けるため,使い捨ての吸入頭を使用しなければならない.

5.2 溶液の調製:

解決策1:サンプル抽出物

70% メタノール,つまりV メタノール:V 離子化水=7:3.

5.3 試料の予備処理手順:

5.3.1 穀物の加工方法

1) 粉砕されたサンプルを2gを50mlの遠心分離管に重量化し,5mlのサンプル抽出溶液を加え,5分間揺さぶり,室温で4000rpm/10分分離センター

2) 0.5mlの超水分を採取し, 0.5mlの離子化水を加え,よく混ぜます.

3) 50 μ L の 分析 を 取る.

試料の稀释比: 5 下部検出限界: 0.15ppb

5.3.2 玉米殻や小麦分などの水吸収が強いサンプルに対する加工方法

1) 2g の粉砕したサンプルを 50ml の遠心分離管に重量化し,サンプル抽出溶液の 20ml を加え,5分間揺さぶり,室温で4000rpm/10分分離センター;

2) 0.5mlの超濃度剤を取り,0.5mlの離子化水を加え,よく混ぜます. (非常に高毒素含有度のサンプルでは,35%のメタノールで希釈してテストすることができます.例えば,0.混合溶液の1ml (2) と0.9ml 35%メタノール混合.最終サンプル稀释比は200で,検出限界は6ppbです.)

3) 50 μ L の 分析 を 取る.

試料の稀释比:20 下部検出限界:0.6ppb

注:標本内の毒素の分布が不均等であるため,2gの検査の前に,複数の点からサンプルを採取し,完全に混ぜる必要があります.

5.3.3 配方飼料の加工方法

1) 2g の粉砕したサンプルを 50ml の遠心分離管に重量化し,10ml のサンプル抽出溶液を加え,5分間揺さぶり,室温で4000rpm/10分分離センター

2) 0.5mlの超水分を採取し, 0.5mlの離子化水を加え,よく混ぜます.

3) 50 μ L の 分析 を 取る.

試料の稀释比: 10 下部検出限界: 0.3ppb

5.3.4 食用油,ピーナッツ油,高脂肪の飼料処理方法

1) 2g の粉砕されたサンプルを50ml の遠心分離管に重量化し,n-ヘキサン8mlとサンプル抽出溶液10mlを加え,5分間,隔離センターの/10分で室温で4000rpmで揺さぶる.

2) 上部液体を取り出して,下部液体の0.5mlを取り出して,デイオニ化水の0.5mlを加えて,よく混ぜて,混合液体の0.5mlを取り出して,35%メタノールを0.5ml加えて,30秒間揺さぶります.

3) 50 μ L の 分析 を 取る.

試料の稀释比: 20 下部検出限界: 0.6ppb

5.3.5 ソース,小麦,ビスケット,パステリーなどの食品や調味料,および飼料濃縮物などの飼料加工方法

1) 2g の粉砕したサンプルを 50ml の遠心分離管に重量化し,10ml のサンプル抽出溶液を加え,5分間揺さぶり,室温で4000rpm/10分分離センター

2) 2mlの超水分を採り,4mlのトリクロロメタン (または二塩化メタン) を加え,5分間揺さぶる.室温で4000rpm/10分分離センター.

3) 上部液体を別の容器に移し,下部液体を待機状態に置き,上部液体にさらに4mlのクロロホルム (またはダイクロロメタン) を加え,完全に揺れて5分混ぜます.室温は10分間にわたって4000rpm/分離センター;

4) 上部液体を取り出して,下部液体を2回混ぜ,完全に混ぜます.

5) 2ml の 結合 下液体を 50~60°C の 窒素 の 下 で 吹いて 乾燥 さ せる.

6) 乾燥した物質を完全に溶かすために 0.5ml のサンプル抽出物を加え,それから 0.5ml のデイオニ化水を混ぜます.

7 50 μL 分析をします

試料の稀释比: 10 下部検出限界: 0.3ppb

5.3.6 ビール加工方法

1) ビールを完全に混ぜる (CO2を取り除く),ビールのサンプルを2ml取り,蒸留水を1ml加え,メタノールを7ml加え,5分間揺るがす.

2) 混合したサンプル溶液の0. 5mlを取り,よく混ぜるために,離子化水の0. 5mlを加える.

3) 50 μ L の 分析 を 取る.

試料の稀释比: 10 下部検出限界: 0.3ppb

5.3.7 ワイン,ソーヤソース,ウチの処理方法

1) 2mlのサンプルを取り,2mlの蒸留水を加え,10mlのトリクロロメタン (またはダイクロロメタン) を加え,5分間,室温で4000rpm/10分分離センターで揺さぶる.

2) 下の液体1mlを採取し,50〜60°Cの窒素の下で吹いて乾燥させる.

3) 乾燥した物質を完全に溶かすために 0.5ml のサンプル抽出物を加え,それから 0.5ml のデイオニ化水を加え,よく混ぜます.

5) 50 μ L の 分析 を 取る.

試料の稀释比: 5 下部検出限界: 0.15ppb

ELISA の 6 段階

必要な試料を 4 °C の冷蔵環境から取り出し,室温で 30 分以上放置する.洗浄溶液が冷蔵されているときに完全に溶けるために,室温に戻さなければならない結晶があるかもしれません.使用前に各液体反応剤を揺さぶる.必要な数の微孔状のプレートとフレームを取り出し,使用していない微孔状のプレートを自己密封袋に入れて,2〜8°Cに保管する.

実験の前に,濃縮洗浄溶液を20 × 20回,作業洗浄溶液に稀釋する.

6.1 番号付け:サンプルとスタンダードの対応する穴を順番に番号付け,各サンプルとスタンダードに並列に2つの穴を作って,スタンダードホールとサンプルの穴の位置を記録する.

6.2 試料添加反応: 基準または試料の50μl/井戸をそれぞれの井戸に加え,その後酵素マーカーの50μl/井戸を加え,その後抗体作業溶液の50μl/井戸を加え,蓋板膜でプレートを封印する5 秒間小心して揺れて混合し,25 °Cで 30 分間反応します.

6.3 洗浄: 蓋板膜を慎重に外し,穴の中の液体を乾燥させ,穴を30秒間隔で5回,穴あたり250μlの洗浄液で完全に洗い,吸い込み紙で乾燥させる (パット後に取り除かれない泡は,クリーンな銃頭で刺すことができます).

6.4 色の発現:各穴に50μlの基板溶液Aと50μlの基板溶液Bを加え,5秒間軽やかに揺さぶり,よく混ぜて,25°Cで暗く15分間にわたって色の発現する.

6.5 終了:各穴に50μlの終了溶液を加え,慎重に揺さぶり,反応を終了するためによく混ぜます.

6.6 吸収値の測定: アフラトキシンテストを使用して,各穴の吸収値を450nmで測定する (双波長450/630nmが推奨される).反応終了後10分以内に測定を完了する.

6.7 ST-2000A自動アフラトキシン検査機は,自動的に決定を完了し,自動的に結果を出します.